Partiklar i vätskeprover måste avlägsnas före analys. Detta för att undvika skador på utrustning som ICP och jonkromatografer. Detta är vad sterila sprutfilter är till för.
Jämfört med den komplexa installationen av Buckner-filter är de billiga och använder mindre. Dessutom kan sprutfiltret filtrera gasen och bakterierna i provet. Du ** noterar dock att sprutfilter är engångs- eller återanvändningsbara.
Hur väljer jag ett nålfilter?
Det finns två aspekter att tänka på när du väljer ett sprutfilter. Låt oss titta på några av de viktigaste:
1. Bländaren
Filter har olika bländare. Vanliga är {{0}}.2um och 0.45um. De flesta program använder vanligtvis ett 0.45um-filter. Men om det finns mycket fina partiklar i provet, är det lämpligt att använda partiklar på 0.2 eller till och med 0.1um. Det är viktigt att notera att det finns andra sätt att filtrera mycket små partiklar, till exempel centrifugalfilter, vilket kan vara ett bättre val.
2. Filtermaterial
Nålfilter finns också i en mängd olika filtermaterial. Cellulosaacetat, polyetersulfon och polyamid är bara några av de vanligaste. Dessutom har de viss kompatibilitet, så se till att välja noggrant. Materialet kommer också att påverka EFA eller effektiv filtreringsområde och kommer också att påverka kapaciteten.
3. Filterstorlek
Eftersom partiklar ackumuleras med tiden kan de täppa till porerna och så småningom inaktivera filter. Det är därför det är viktigt att välja ett sprutfilter som kan hålla mer vätska. I allmänhet har filter med större diameter högre retentionsvolymer. Retention är mängden vätska som finns kvar efter användning av filtret. Det rekommenderas också att filter med mindre diameter används med sällsynta och dyra vätskor.
Användning av sprutfilter
Här är några förslag på hur man använder sprutfilter. Även om vi listar dessa metoder nedan, är det bäst att gå igenom hela testprocessen.
När du inte är bekymrad över lågkoncentrationsföroreningar och hanterar prover med hög koncentration:
1. Skaffa ** lämpliga filter.
2. Andas in 1 ml luft och ta ett prov i en steril spruta.
3. Häll 1 ml av provet i avfallsbehållaren.
4. Töm återstående prover i rena flaskor för förvaring.
5. Tryck in den första inandningsluften i samma flaska. Detta steg kommer att trycka ut den återstående vätskan och minska den kvarhållna volymen.
6. Kassera sprutor och filter på rätt sätt.
När du är orolig för kontaminering är processen väldigt lik, men det finns andra steg som måste utföras innan du tar ett prov:
1. Använd det lämpligaste filtret.
2. Sug upp 1 ml luftkudde och sug sedan upp 10 ml blank matris (t.ex. mili-Q eller 1 % salpetersyra)
3. Mata ut substratet och luftkudden i avfallsbehållaren.